Открытый доступ Открытый доступ  Ограниченный доступ Платный доступ или доступ для подписчиков

Состав и антилипазная активность C,O-гликозилфлавонов желтокорых сортов Cucumis sativus L. (Cucurbitaceae)

Даниил Николаевич Оленников, К. В. Маркова, Н. К. Чирикова, Т. Г. Горностай, В. В. Величко, О. Г. Потанина

Аннотация


Растительные отходы тепличного производства Cucumis sativus L. (Cucurbitaceae) содержат различные группы биологически активных соединений, среди которых C,O-гликозилфлавоны, выявленные в наиболее распространенных зеленокорых сортах огурца. В настоящей работе впервые показано, что экстракты листьев желтокорых сортов C. sativus также характеризуются высоким содержанием флавоноидов (14,02 – 32,87 мг/г) и оказывают ингибиторное влияние на панкреатическую липазу человека (IC50 53,15 – 175,52 мкг/мл). С применением жидкостной хромато-масс-спектрометрии обнаружено присутствие 32 флавоноидов, среди которых производные изовитексина, изоскопарина и изоориентина в форме неацилированных и ацилированных C,O-гликозидов. Три новых гликозида изоскопарина выделены из листьев C. sativus сорта Китайский желтый и идентифицированы по данным УФ-, ЯМР-спектроскопии и масс-спектрометрии как изоскопарин 4’,2’’-ди-О-глюкозид (кукумозид L), изоскопарин 4’-О-глюкозид (кукумозид M) и изоскопарин 2’’-О-кофеат (кукумозид N). Исследование антилипазной активности индивидуальных соединений показало, что присутствие кофеильного фрагмента в структуре повышало активность соединений, а 4’-О-глюкозилирование — снижало. Полученные результаты свидетельствуют о возможности применения отходов культивации желтокорых сортов C. sativus в качестве источника для получения флавоноидов с антилипазным действием.

Ключевые слова


Cucumis sativus; огурец посевной; зеленые отходы; гликозилфлавоны; антилипазная активность

Полный текст:

PDF

Литература


H. R. Bajes, I. Almasri, Y. Bustanji, Rev. Bras. Farmacogn., 30, 321 – 330 (2020).

T.-T. Liu, X.-T. Liu, Q.-X. Chen, Y. Shi, Biomed. Pharmaco-ther., 128, 110314 (2020).

T. Buchholz, M. F. Melzig, Planta Med., 81, 771 – 783 (2015).

A. J. A. Petrus, Orient. J. Chem., 30, 149 – 154 (2014).

A. Khan, A. Mishra, S. M. Hasan, et al., J. Complement. Integr. Med., 19, 843 – 854 (2022).

R. Shinde, D. K. Shahi, P. Mahapatra, et al., Ind. Crops Prod., 181, 114772 (2022).

M. Krauze-Baranowska, W. Cisowski, Biochem. Syst. Ecol., 29, 321 – 324 (2001).

M. M. Abou-Zaid, D. A. Lombardo, G. C. Kite, et al., Phyto-chemistry, 58, 167 – 172 (2001).

D. J. McNally, K. V. Wurms, C. Labbй, et al., J. Nat. Prod., 66, 1280 – 1283 (2003).

D. N. Olennikov, N. I. Kashchenko, Chem. Nat. Compd., 59, 651 – 654 (2023).

D. N. Olennikov, N. I. Kashchenko, Appl. Biochem. Microbiol., 59, 530 – 538 (2023).

D. N. Olennikov, Separations, 10, 255 (2023).

D. N. Olennikov, N. I. Kashchenko, Agronomy, 13, 2410 (2023).

D. N. Olennikov, N. I. Kashchenko, Chem. Nat. Compd., 60, 207 – 212 (2024).

K. Rahman, L. Krenn, B. Kopp, et al., Phytochemistry, 45, 1093 – 1094 (1997).

J. Buckingham, V. R. N. Munasinghe, Dictionary of Flavonoids, CRC Press, Boca Raton (2015).

Z. Tian, X. Hu, Y. Xu, et al., Nucleic Acids Res., 5, D1579 – D1587 (2024).

M. M. Li, Y. T. Chen, J. C. Ruan, et al., Curr Res. Food Sci., 6, 100424 (2023).

R. Huang, Y. Zhang, S. Shen, et al., Food Chem., 326, 126785 (2020).

R. Hana, I. Almasri, Y. Bustanji, Rev. Bras. Farmacogn., 30, 321 – 330 (2020).




DOI: https://doi.org/10.30906/0023-1134-2024-58-11-33-40

Ссылки

  • На текущий момент ссылки отсутствуют.


 Издательский дом «Фолиум», 1993–2024

Баннеры наших партнеров:

laboratorka.su            

Наши издания:
Подписаться на наши издания Вы можете через Объединенный каталог «Пресса России», а также на сайтах агентств «УП Урал Пресс», «Ивис», «Прессинформ» и «Профиздат»Адрес редакции:
Россия, Москва, Дмитровское шоссе, 157
Тел.: +7 499 258-08-28 (доб. 18)
E-mail: chem@folium.ru